1炎症状态对CYP2B6活性和表达的影响
炎症是机体最常见的一种病理状态。因此科研工作者们相继从转录及转录后水平开展了大量炎症状态对CYP450的调节研究。20世纪80年代以来，美国Emory大学EdwardT.Morgan教授和他的科研团队致力于研究感染和炎症反应对CYP450的影响。其研究结果显示，感染和炎症条件下，人、大鼠和小鼠肝脏、肾脏和脑组织的细胞色素P450酶表达和活性改变显著。例如给小鼠腹腔注射脂多糖（LPS），LPS能够通过细胞的表面受体激活巨噬细胞，分泌大量促炎性细胞因子，继而对多种CYP450亚型呈现抑制作用。给大鼠分别腹腔注射IL-6和TNFγ后，CYP2C11、CYP2E1和CYP3A2的mRNA表达均下降。分别以人原代肝细胞和大鼠原代肝细胞等为实验对象，用促炎性细胞因子IL-1β和IL-6、TNFα和细胞进行共孵育，发现1A2、2A5、2B1、2B6、2B9、2B10、2C11、2C29、2E1、3A2、3A4、3A11和4A10等CYP的蛋白表达量或活性都显著降低，其中尤以对CYP2B6的影响非常显著，提示炎症能使经CYP2B6途径药物如环磷酰胺、依法韦仑和安非他酮等的体内代谢率显著下降，消除半衰期延长，导致体内药物蓄积而发生严重不良反应[15-19]。
2炎症状态对CYP2B6活性影响的机制研究
研究者对炎症状态下CYP450活性改变的机制也进行了一系列研究，以往的研究更多地关注炎性细胞因子对CYP450的mRNA表达等转录水平的影响，后来大量实验结果证实，炎性细胞因子在对CYP450mRNA表达无影响的情况下，依然可以降低肝药酶活性，提示转录后修饰在此过程中也扮演了重要的角色。
2.1NO在炎症状态对CYP2B6活性改变中的作用
NOS包括神经元型一氧化氮合酶（nNOS）、内皮型一氧化氮合酶（eNOS）以及诱导型一氧化氮合酶（iNOS）三种亚型，感染和炎症主要增加iNOS的表达。CYP2B6在大鼠肝细胞主要以CYP2B1形式存在，与人肝细胞CYP2B6的基因有76%的相似。笔者近年来系统研究了炎性细胞因子IL-1β对大鼠CYP2B1的下调作用及其机制。实验结果证实，IL-1β与大鼠原代肝细胞共孵育，可显著诱导iNOS的蛋白表达，增加NO的生成，并进而使CYP2B1蛋白质半胱氨酸的巯基亚硝基化，易于被泛素-蛋白酶体识别而快速降解[21-22]，提示NO和泛素-蛋白酶体系统在炎症对CYP2B6的影响中起到了至关重要的作用，从转录后蛋白降解的水平阐述了IL-1β抑制CYP2B1的机制。
2.2蛋白质修饰在炎症状态对CYP2B6活性改变中的作用
1992年，Stamler等[23]发现NO和活性氮（RNS）可以作用于蛋白质半胱氨酸的巯基（Cys-SH），生成S-亚硝基化基团（Cys-SNO），引起蛋白质的活性与功能的改变，并首次提出了蛋白质巯基的S-亚硝基化修饰概念[24]。Minamiyama等[25]研究发现，使用NO供体NOC7或过氧化亚硝酸盐（ONOO-）和肝微粒体共孵育，可以引起CYP450活性降低及游离巯基的减少。Roberts等[26]也发现IL-1可以使肾小球膜细胞中产生ONOO-，继而使CYP8A1和CYP2B1的活性下降，研究者猜测是由于ONOO-使CYP8A1和CYP2B1酪氨酸残基硝基化，降低了酶的催化活性。要深入阐明NO对蛋白质的亚硝基化修饰作用，需要有高灵敏度和特异性的检测方法。2001年，美国药理学家Jaffrey和Snyder等[27]建立了一种生物素转化的方法（Biotinswitch）来进行S-亚硝基化蛋白的检测。该方法经过不断的改进和完善，目前已得到国际公认[28]。Benhar等[29]成功利用该方法测定了人淋巴细胞中半胱天冬酶-3蛋白的亚硝基化修饰，并发现细胞质和线粒体中的硫氧还蛋白（thioredoxins，Trx）能够降低去亚硝基化的过程。除了亚硝基化外，NO和RNS还可以对半胱氨酸的巯基进行次磺酸化（Cys-SOH）等氧化修饰。研究显示，RNS可以使酪氨酸羟化酶的半胱氨酸次磺酸化，导致酶的活性下降[30]。GSNO能够对组织蛋白酶K的半胱氨酸进行次磺酸化修饰而改变酶的活性[31]。2008年，美国密歇根大学Reddie教授等[32]利用新合成的特异性探针化合物DAz-1，建立了一种新的次磺酸化蛋白检测方法，为研究蛋白质的氧化修饰机制开辟了广阔的前景。2008年，Lee等[33]用NO供体GNSO与大鼠肝微粒体体外共孵育，采用Biotinswitch法检测到经S-亚硝基化修饰的CYP2B1，并发现泛素化CYP2B1蛋白明显增加，表明NO能够对CYP2B1蛋白进行亚硝基化修饰，并促进其和泛素连接；实验还发现另一NO供体NOC18和HeLa细胞共孵育，能够引起CYP2B1蛋白量下降，蛋白酶体（proteasome）抑制剂MG132可以明显抑制这一过程，但溶酶体酶抑制剂和Ca2+依赖性蛋白酶抑制剂对CYP2B1蛋白的降解无影响，说明NO作用下CYP2B1的降解通过泛素-蛋白酶体途径进行。
2.3泛素-蛋白酶体通路在炎症状态对CYP2B6活性改变中的作用
泛素-蛋白酶体通路（Ub-proteasomesystem，UPS）是除溶酶体途径、Ca2+依赖性蛋白酶途径之外的另一种细胞内蛋白质选择性降解的重要途径，这一发现获得了2004年诺贝尔化学奖。该通路由泛素、蛋白酶体以及一系列相关的泛素激活酶E1、泛素结合酶E2和泛素连接酶E3组成[34]。泛素是一种小分子球蛋白，能作为“标签”结合到其他蛋白质上，蛋白质被亚硝基化或者次磺酸化修饰后易被泛素连接酶E3识别，使之成为蛋白酶体水解的底物。蛋白酶体是具有多亚基和多相催化活性的蛋白酶复合体，是催化泛素与底物蛋白偶联体降解的关键酶，调节着细胞内蛋白的水平和功能[35]。笔者近年研究发现，单纯使用外源性NO供体药物NOC18同样可以使大鼠原代肝细胞CYP2B1蛋白表达量下降，但降解过程比IL-1所致的CYP2B1蛋白量下降缓慢。有文献报道IL-1可以诱导烧伤大鼠趾长伸肌中免疫蛋白酶体的蛋白水解活性和表达[36]。由此我们推测，IL-1可能通过直接增强大鼠原代肝细胞蛋白酶体的活性或表达，加速了CYP2B1的蛋白降解。最近，我们利用特异性荧光多肽底物初步测定了IL-1对大鼠原代肝细胞蛋白酶体活性的影响，实验结果显示，IL-1能提高蛋白酶体的糜蛋白样（chymotrypsin-like，CT-L）活性。另外，IL-1能够诱导蛋白酶体重要的蛋白水解亚单位LMP2的表达，从而从蛋白酶体途径揭示了炎性细胞因子降低CYP2B1活性的机制[20]。
3展望
CYP2B6是人类CYP2B亚家族的重要成员，近年来发现，尽管CYP2B6只占CYP450的3%~5%，但它却介导了许多临床药物的代谢。和其他CYP450一样，CYP2B6的活性和表达，除了受基因多态性控制外，特殊的病理状态，如感染和炎症也会对其产生显著的影响，导致其对许多临床药物如抗肿瘤药、抗HIV感染的非核苷类反转录酶抑制剂和抗抑郁药等的代谢发生重大改变。因此，研究炎症对CYP2B6活性的影响，对临床合理、安全使用CYP2B6底物药物具有非常重要的意义。目前许多研究证实，炎症状态可以从转录后调节水平显著降低CYP2B6的活性，这一改变机制涉及NO生成、蛋白质修饰等多种因素。进一步高度关注和持续研究炎症状态对CYP2B6活性的作用及机制，将为临床病理状态下CYP2B6底物药物的正确使用提供有价值的理论和实验依据。
作者：孙海燕
